Para utilizar animales para investigación, enseñanza o pruebas, el usuario de animales debe cumplir con todas las obligaciones asociadas con este privilegio. Estas obligaciones incluyen:

1. Finalización de la formación adecuada para proporcionar competencia en el manejo de las especies que se utilizarán y competencia en los procedimientos que se utilizarán. Esta capacitación puede lograrse a través de sitios de capacitación en línea, viendo videos / CD de capacitación, etc., y / o "laboratorios y talleres" realizados por la OACC y la ARF.
2. Aprobación del Comité Institucional de Uso y Cuidado de Animales para usar animales como se propone en el Formulario oficial de Protocolo de Uso y Cuidado de Animales.

1. INTRODUCCIÓN, RESUMEN, PRINCIPIOS
   La ley federal requiere que los investigadores de animales consulten con el veterinario a cargo durante las etapas de planificación de los procedimientos en animales para garantizar, entre otras cosas, el uso adecuado de anestésicos, analgésicos y tranquilizantes. Al completar el formulario del Protocolo de uso de animales, se le pedirá que complete una sección sobre el uso de anestésicos y analgésicos, incluida la dosis y la vía de administración. Los anestésicos y analgésicos más comúnmente empleados para animales de laboratorio; su dosis, vía de administración y duración aproximada de acción se enumeran a continuación por especies. Esta información solo debe usarse como guía, ya que puede haber una variación sustancial entre las cepas o razas dentro de una especie. La variabilidad de la respuesta a la dosis de la anestesia se ha vuelto cada vez más común con la llegada de los ratones modificados genéticamente. Consultar con el veterinario institucional puede ayudarlo a elegir el agente adecuado para sus necesidades particulares. El veterinario puede proporcionar consideraciones adicionales relacionadas con el uso adecuado, los mecanismos de acción, las vías de administración aceptadas, la monitorización de la profundidad de la anestesia y otros aspectos técnicos del uso de agentes anestésicos. Es especialmente importante que los investigadores en animales informen al veterinario si se experimentan muertes relacionadas con la anestesia, si la respuesta del sujeto a los protocolos anestésicos es inconsistente, si las dosis recomendadas de anestésico o analgésico parecen inadecuadas, etc. Cualquier problema o inconsistencia con la analgesia debe considerarse grave. asuntos y discutidos con el personal veterinario.
2. USO CONTROLADO DE SUSTANCIAS
   Algunos anestésicos y analgésicos de uso común en medicina veterinaria son sustancias controladas. La mayoría de los analgésicos y muchos anestésicos inyectables son sustancias controladas. Su uso requiere que el investigador obtenga un número de la DEA (Administración de Control de Drogas) u obtenga el medicamento de forma individual a través de la ARF. La ARF mantiene el registro de la DEA con el propósito de proporcionar a los investigadores de animales sustancias controladas que son esenciales para la realización de investigaciones aprobadas por IACUC. Se debe mantener un registro de uso de sustancias controladas proporcionado por ARF, y estos medicamentos deben almacenarse en una caja de seguridad de acceso restringido. Para solicitar sustancias controladas de la ARF, debe enviar un formulario de solicitud de sustancias controladas a la oficina de la ARF.
3. AGENTES DE INHALACIÓN
4. AGENTES ANESTÉSICOS INYECTABLES
   Los agentes anestésicos inyectables han sido durante mucho tiempo la elección de los investigadores de animales de laboratorio, no por sus cualidades anestésicas superiores, sino más bien por su relativa facilidad de uso. Desafortunadamente, incluso cuando se usa de acuerdo con los regímenes de dosificación establecidos, la mortalidad relacionada con la anestesia es mucho mayor para los agentes inyectables, en comparación con los anestésicos gaseosos administrados correctamente. Es mucho más difícil controlar la profundidad de la anestesia con anestésicos inyectables, a menos que se coloque un catéter intravenoso. Los períodos de recuperación también son generalmente prolongados y la hipotermia es una secuela común del uso de anestésicos inyectables. Siempre que sea posible, se deben elegir los anestésicos inhalantes sobre los agentes inyectables para su uso en animales de laboratorio. Los enlaces a continuación proporcionan algunas pautas para la elección del anestésico. Se debe consultar al veterinario tratante para obtener recomendaciones específicas.
5. AGENTES
   Los agentes analgésicos para animales de laboratorio son generalmente más efectivos administrados por inyección antes del inicio de los procedimientos que provocan dolor y también después del procedimiento si se observan signos de dolor. Los compuestos disponibles por vía oral generalmente no se recomiendan porque es difícil proporcionar una dosificación precisa y constante, ya que los animales tienden a beber menos cuando tienen dolor, los analgésicos generalmente no son agradables y la mayoría son insolubles en agua. El mejor régimen para el manejo del dolor que implica procedimientos quirúrgicos dolorosos es utilizar analgésicos de forma preventiva como parte de la inducción de la anestesia. Los analgésicos deben usarse para todos los procedimientos quirúrgicos mayores, para el manejo del dolor posoperatorio. Aunque una sola dosis administrada antes de la operación puede ser suficiente, todos los animales deben ser monitoreados en busca de signos de dolor después de la operación para determinar si están indicadas dosis adicionales. El uso y la dosis de analgésicos dependen en gran medida de la especie y el procedimiento. Los enlaces a continuación proporcionan algunas pautas específicas de especies para la elección de los agentes analgésicos disponibles. Se debe consultar al veterinario tratante para conocer los regímenes analgésicos específicos y apropiados.
6. RECOMENDACIONES DE DOSIS (POR ESPECIE)
   Las recomendaciones para la elección del anestésico se proporcionan en las siguientes secciones; dividido por especies. Tenga en cuenta que estas son las dosis recomendadas que han funcionado con relativa consistencia en cada una de las especies enumeradas. Sin embargo, muchos factores afectan el éxito o el fracaso de los anestésicos y analgésicos, incluidos; salud del animal, estrés, dolor, angustia, hora del día, estado metabólico, etc. Todos los investigadores deben consultar con el personal veterinario sobre el régimen anestésico / analgésico adecuado.
   ANFIBIOS (Ranas)
   PÁJAROS (pollos, patos)
   FERRETOS
   M.I.C.E.
   CONEJOS
   Ratas

Instalaciones de cirugía ARF
Los requisitos generales de cirugía, supervivencia y no supervivencia para todas las especies se describen en un resumen detallado. "Pautas quirúrgicas generales". Un segundo resumen titulado "Pautas quirúrgicas para roedores" describe la información y los requisitos específicos para la cirugía que involucra a los roedores de laboratorio.

Pautas de cirugía de supervivencia
La cirugía de supervivencia, independientemente de la especie, debe realizarse de forma aséptica. Los procedimientos quirúrgicos en especies no roedores, más grandes que la rata de laboratorio, deben realizarse en instalaciones quirúrgicas especializadas (instalación de cirugía ARF). Los requisitos generales de cirugía, supervivencia y no supervivencia para todas las especies se describen en un resumen detallado. "Pautas quirúrgicas generales". Un segundo resumen titulado "Pautas quirúrgicas para roedores" describe la información y los requisitos específicos para la cirugía que involucra a los roedores de laboratorio. En general, la técnica aséptica, la anestesia y analgesia adecuadas, la monitorización intraoperatoria adecuada del paciente y las disposiciones para el cuidado postoperatorio son requisitos mínimos para realizar una cirugía de supervivencia en todas las especies. Los principios de la cirugía aséptica abordan lo siguiente: esterilización de instrumentos, preparación del cirujano, preparación del sitio quirúrgico y todos los procedimientos quirúrgicos, desde la incisión en la piel hasta el cierre. El control de la anestesia es imperativo y debe documentarse en especies más grandes que los ratones y las ratas.

Pautas quirúrgicas

Pautas de cirugía sin supervivencia (terminal, aguda)
La cirugía de no supervivencia se define como la cirugía realizada bajo anestesia general y el paciente no se recupera de la anestesia. La eutanasia se realiza al final de los procedimientos de cirugía experimental, generalmente con una sobredosis de anestésico, administrada por vía intravenosa. Los procedimientos que no son de supervivencia requieren el uso de instrumentos limpios y disposiciones para un control adecuado de la profundidad de la anestesia.

En las salas de los animales se pueden realizar procedimientos menores como inyecciones, dosificación oral, observaciones, pesaje, etc. El ARF proporciona salas de procedimientos con anestesia por inhalación, cámaras de inducción, conos nasales, dispositivos de eliminación de gases residuales y unidades de recuperación para aquellos procedimientos en los que la anestesia puede ser deseable para la inmovilización o inmovilización, como la extracción de sangre, biopsias, inyecciones intravenosas, etc.

El manejo y sujeción de todos los animales, pero especialmente de los roedores, es una habilidad que se desarrolla a partir de la práctica y el entrenamiento adecuado. Los animales deben ser inmovilizados de manera suave, firme y rápida para minimizar el potencial de estrés y daño tanto para el inmovilizador como para el inmovilizador. El ARF ofrece talleres "prácticos" para personas que requieren una introducción a los métodos de sujeción adecuados.

Todo el alojamiento y la cría de animales de investigación son proporcionados por el personal de ARF de acuerdo con las Guía para el cuidado y uso de animales de laboratorio. Si un protocolo aprobado por IACUC describe condiciones de vivienda no estándar, el personal de ARF debe ser informado de la exención. El investigador debe desarrollar un Procedimiento Operativo Estándar (SOP), aprobado por el veterinario de ARF y colocado en la sala de animales. Si el IP asume la responsabilidad de la cría de los animales, se debe colocar un registro / hoja de registro en la sala que registre las tareas de cría realizadas por el personal de investigación.

Eutanasia de animales de laboratorio
La eutanasia es el acto de inducir una muerte humana. En animales de laboratorio, la eutanasia suele ser el criterio de valoración de cualquier experimento. Es imperativo que los investigadores realicen la eutanasia con respeto por la vida del animal y con el entendimiento de que el dolor, la ansiedad y la angustia deben minimizarse durante el procedimiento. La técnica empleada para la eutanasia debe garantizar una pérdida rápida del conocimiento, seguida del cese de las funciones cardíaca y respiratoria y, finalmente, la pérdida de la actividad cerebral. Cualquiera que sea el método que se elija, se debe considerar la posibilidad de reducir el estrés y la ansiedad asociados con el procedimiento. Las Directrices de la Asociación Americana de Medicina Veterinaria sobre la eutanasia compilaron un informe en 2020. Este informe contiene directrices específicas para cada especie y métodos aceptables de eutanasia. Vea este informe en: http://www.avma.org/issues/animal_welfare/euthanasia.pdf. Para realizar la eutanasia en animales, el individuo debe estar adecuadamente capacitado y ser competente en el procedimiento. Los métodos de eutanasia deben estar detallados en el protocolo de uso y cuidado de animales aprobado por IACUC. Los métodos utilizados deben incluir medidas para garantizar que se haya producido la muerte; que no hay posibilidad de que el animal se recupere y recobre la conciencia. La capacitación está disponible a través de ARF o la Oficina de Cumplimiento y Cuidados de Animales.

Eutanasia de fetos y neonatos de ratón y rata
Los fetos tardíos y los roedores recién nacidos son capaces de experimentar dolor y angustia. Se deben tener en cuenta los requisitos adicionales para realizar la eutanasia humanitaria de fetos y recién nacidos a término. El Consejo Asesor de Investigación Animal de los NIH ha desarrollado directrices para la eutanasia de fetos y neonatos de roedores. Revise estas recomendaciones para determinar métodos aceptables de eutanasia para fetos y recién nacidos de ratones y ratas.

Eutanasia de roedores con dióxido de carbono
La asfixia con dióxido de carbono es el método más común empleado para sacrificar pequeños roedores (por ejemplo, ratones y ratas). Se debe emplear una metodología adecuada para reducir el potencial de ansiedad, angustia y dolor asociados con altas concentraciones de CO.₂. El Consejo Asesor de Investigación Animal de los NIH ha publicado Directrices para la eutanasia de roedores con dióxido de carbono. La ARF ha publicado estas recomendaciones como SOP (Procedimiento operativo estándar) en la ARF cerca de las estaciones de CO2. Si CO₂ La eutanasia se utiliza en laboratorios de investigación, el IP debe solicitar el equipo adecuado a la ARF y publicar el SOP proporcionado por la ARF.

La ARF es responsable de TODAS las adquisiciones de animales de investigación. TODAS las solicitudes de animales y todos los pedidos de animales DEBEN ser realizadas SOLAMENTE por la oficina de ARF. Todas las solicitudes y consultas para utilizar animales deben dirigirse a la oficina de ARF. Los procedimientos para la obtención de animales se detallan a continuación:

• Requisitos previos / condiciones
  Para mantener animales en el ARF, un investigador principal DEBE:
  • Tener un Protocolo de uso y cuidado de animales aprobado por la IACUC con números suficientes disponibles para las especies solicitadas.
  • Tener una cuenta ARF para fines de facturación. Para establecer una cuenta, dirija sus consultas a Departamento de contabilidad ARF.
• Vendedores comerciales
  Al realizar un pedido de animales para roedores, primero debe determinar la especie / cepa / subcepa / genotipo que necesita. Si no está seguro del proveedor, visite la siguiente lista de proveedores aprobados para determinar la disponibilidad, el costo, etc.
  • Modelos de investigación de Envigo
  • Laboratorios Jackson
  • Laboratorios Charles River
  • Taconico
• Plazos de pedidos de animales
  • Los pedidos de animales a los vendedores se realizan habitualmente los miércoles por la mañana a las 10:00 a. m.
  • Las solicitudes de pedidos de animales deben realizarse a través de Topaz Elements ANTES de las 10:00 a. m. del miércoles por la mañana la semana anterior a la fecha de entrega solicitada.
  • Los pedidos especiales deben realizarse y comunicarse con el personal de ARF para realizar el pedido.

Para recibir animales de otra institución académica o de investigación, la transferencia primero debe ser aprobada por el veterinario a cargo del HSC ARF. La aprobación se basa en la determinación del estado de salud y SPF (libre de patógenos específicos) de los animales. Para completar esta evaluación, el veterinario del HSC ARF debe revisar un Informe de vigilancia de la salud, que será proporcionado por el personal veterinario de la institución de origen. Procedimientos de transferencia de animales:

1. Completo requerido MTA formulario 
2. Completar el formulario IMPORTACIÓN DE ANIMALES A UNM formulario
3. Reenviar el documento a la institución de origen para completar la copia de la información de contacto. vsugita@salud.unm.edu .
4. Envíe el formulario completo al vsugita@salud.unm.edu con una explicación completa de la solicitud
5. La oficina de la ARF le notificará la aprobación o desaprobación de la solicitud, así como las condiciones de importación y cuarentena de los animales.
6. Cuando se le notifica de la aprobación, el PI es responsable de realizar un pedido de animales en TOPACIO.

1. Complete el formulario EXPORTACIÓN DE ANIMALES DESDE UNM
2. Reenvíe el documento completo a la institución de destino copiando vsugita@salud.unm.edu
3. Coordinar el envío a través de Supervisor ARF
4. ARF gestionará el envío / transferencia

Todos los animales mantenidos dentro del ARF deben mantenerse en un Protocolo de uso y cuidado de animales aprobado por IACUC actual. Si desea transferir animales de un protocolo a otro, debe saber cuáles son los números del protocolo animal. Si los animales se transfieren de un IP a otro, según los protocolos aprobados, los nombres de los IP y los números de protocolo deben estar disponibles.

1. Complete y envíe el formulario de transferencia de animales correspondiente
2. Provee la siguiente informacion:
   1. Cantidad de animales, número de jaulas
   2. Género edad
   3. Arreglos de vivienda solicitados
   4. Número de tarjetas de jaula necesarias
   5. Números de protocolo
   6. Nombre (s) de PI
   7. Habitación para animales solicitada

1. Completar y enviar MTA formulario
2. Complete el formulario IMPORTACIÓN DE ANIMALES A UNM
3. Envíe el formulario de importación completo a la institución receptora y copie vsugita@salud.unm.edu
4. IMPORTACIÓN: Siga las pautas del USDA para la importación de animales a los Estados Unidos - http://www.aphis.usda.gov/import_export/animals/live_animals.shtml. El USDA normalmente no regula la importación de roedores de laboratorio a menos que hayan estado expuestos a enfermedades animales relacionadas con la agricultura extranjera. Sin embargo, se debe agregar información específica al certificado de salud según las Directrices del USDA para la importación de mamíferos de laboratorio # 1103 [ http://www.aphis.usda.gov/import_export/animals/animal_import/downloads/ilivemam.html]. El CDC regula la importación de especies específicas de animales y animales y tejidos infectados si presentan riesgos de enfermedades infecciosas para los seres humanos. Las especies específicas incluyen primates no humanos, perros, gatos, hurones, roedores africanos y otras mascotas exóticas. Libre de patógenos específicos (los ratones y ratas de laboratorio SPF generalmente no están regulados por los CDC).

• • EXPORTACIÓN: Comuníquese con el Supervisor ARF
  • Póngase en contacto con UNM HSC Veterinario ARF para obtener información adicional que pueda ser necesaria.

El Programa de Investigación Animal de HSC está registrado como un centro de investigación con el USDA (85-R-0014), tiene una Carta de Garantía en el archivo de PHS / OLAW (A3350-01) y está completamente acreditado por la Asociación para la Evaluación y Acreditación de Laboratorio Animal Care International (Archivo de Unidad de Acreditación AAALAC No. 000222).

La ARF está acreditada por la AAALAC y se adhiere a todas las disposiciones de la política de PHS sobre el cuidado y uso de animales de laboratorio, la Guía para el cuidado y uso de animales de laboratorio y la Ley de Bienestar Animal y las regulaciones de implementación.

Para la presentación de propuestas a los NIH que involucran animales vertebrados, la "Hoja de trabajo para la revisión de la Sección de Animales Vertebrados (VAS)" (http://grants.nih.gov/grants/olaw/VASchecklist.pdf) deben ser referenciados para asegurar que se proporcione la información necesaria sobre el programa animal. Los NIH publicaron una guía adicional para preparar el VAS (http://grants.nih.gov/grants/olaw/VASfactsheet_v12.pdf), de fecha 18 de enero de 2012. Además, ARF proporciona una plantilla estándar para respaldar la información que se solicita en los párrafos 3-5 de este Lista de verificación de la placa de calderas ARF.

El UNM HSC mantiene 40,000 pies cuadrados. del espacio de instalaciones de recursos animales (ARF), dirigido por Kevin O'Hair, DVM que está certificado por la junta en la Facultad de Medicina Animal de Laboratorio (ACLAM) y miembro de la facultad del departamento de Patología de la Facultad de Medicina. El ARF está ubicado en la planta baja contigua del Edificio de Ciencias Médicas Básicas (BMSB) y el Centro de Investigación Biomédica (BRF). El ARF se mantiene como una instalación libre de patógenos específicos (SPF) esencial para la investigación científica actual, y contiene instalaciones de barrera especializadas para la reproducción de ratones de laboratorio. El ARF también proporciona apoyo técnico y veterinario para todos los proyectos educativos y de investigación que utilizan animales de laboratorio. El ARF abarca áreas de alojamiento de animales y áreas de uso especial, como salas de tratamiento, laboratorios de procedimientos, áreas de investigación de imágenes, biopeligro y exposición química, quirófanos y salas de protección para roedores. El programa de cuidado de animales cuenta con el apoyo de Christie Wilcox, AS, RLATG, Gerente de operaciones y un equipo de seis técnicos de animales de laboratorio.

Instalaciones especializadas:

1. Instalaciones de riesgo biológico (BSL)
2. Barreras de mejoramiento e investigación
3. Instalación de exposición a sustancias químicas peligrosas
4. La cirugía
5. Laboratorios de procedimientos
6. Necropsia
7. Proyección de imagen

Todos los animales en el Centro de Ciencias de la Salud están alojados en las instalaciones administradas por la Instalación de Recursos Animales (ARF). Las salas de alojamiento de animales están bajo control de temperatura y humedad. La instalación está dirigida por una veterinaria de tiempo completo, Tara G. Ooms Konecny, DVM, DACLAM (directora de ARF y veterinaria asistente) y cuenta con un supervisor de la instalación (RLATG), 3 técnicos superiores de cuidado de animales (LAT) y 7 técnicos de cuidado de animales; el Director de ARF o un veterinario clínico de emergencia está disponible en todo momento. El personal de cuidado de los animales lleva a cabo procedimientos rutinarios de manejo (por ejemplo, limpieza de jaulas, alimentación y agua) y revisa a los animales diariamente para evaluar su condición. El personal de cuidado de animales completa diariamente las hojas de la sala de observación clínica y las envía al gerente de operaciones. Estos informes se envían al veterinario cuando se informan inquietudes clínicas. El personal del laboratorio supervisa a los animales cuando se administran los tratamientos y se registran los puntajes de la condición posterior al procedimiento de los animales individuales cuando se determina que es necesario en función de la morbilidad esperada y según lo requieran los respectivos protocolos aprobados por IACUC. El personal veterinario monitorea a los animales en sus jaulas de origen, cada dos semanas o inmediatamente cuando el personal de cuidado de animales o de laboratorio informa inquietudes clínicas. si los animales muestran algún indicio de infección, enfermedad o angustia, el personal veterinario consulta con el personal del laboratorio para recomendar antibióticos, analgésicos u otros productos farmacéuticos/cuidados de apoyo apropiados. El veterinario puede intervenir o recomendar la eutanasia en función de las preocupaciones sobre el bienestar animal.

El director de la ARF es responsable de la administración del Programa de Atención Veterinaria, la supervisión de la gestión de las instalaciones, la supervisión, la capacitación y el cumplimiento. El programa de atención veterinaria incluye disposiciones para la vigilancia de la salud de todos los animales, programas específicos de garantía de calidad para las poblaciones de roedores, un programa de pruebas de cuarentena y pautas de tratamiento específicas.

El director de ARF también proporciona revisión y consulta veterinaria para todos los protocolos educativos y de investigación presentados al Comité Institucional de Uso y Cuidado de Animales.